\documentclass[10pt,a4paper]{article}

% Packages
\usepackage{fancyhdr}           % For header and footer
\usepackage{multicol}           % Allows multicols in tables
\usepackage{tabularx}           % Intelligent column widths
\usepackage{tabulary}           % Used in header and footer
\usepackage{hhline}             % Border under tables
\usepackage{graphicx}           % For images
\usepackage{xcolor}             % For hex colours
%\usepackage[utf8x]{inputenc}    % For unicode character support
\usepackage[T1]{fontenc}        % Without this we get weird character replacements
\usepackage{colortbl}           % For coloured tables
\usepackage{setspace}           % For line height
\usepackage{lastpage}           % Needed for total page number
\usepackage{seqsplit}           % Splits long words.
%\usepackage{opensans}          % Can't make this work so far. Shame. Would be lovely.
\usepackage[normalem]{ulem}     % For underlining links
% Most of the following are not required for the majority
% of cheat sheets but are needed for some symbol support.
\usepackage{amsmath}            % Symbols
\usepackage{MnSymbol}           % Symbols
\usepackage{wasysym}            % Symbols
%\usepackage[english,german,french,spanish,italian]{babel}              % Languages

% Document Info
\author{sarazemma}
\pdfinfo{
  /Title (genetique-sbi4u.pdf)
  /Creator (Cheatography)
  /Author (sarazemma)
  /Subject (Génétique SBI4U Cheat Sheet)
}

% Lengths and widths
\addtolength{\textwidth}{6cm}
\addtolength{\textheight}{-1cm}
\addtolength{\hoffset}{-3cm}
\addtolength{\voffset}{-2cm}
\setlength{\tabcolsep}{0.2cm} % Space between columns
\setlength{\headsep}{-12pt} % Reduce space between header and content
\setlength{\headheight}{85pt} % If less, LaTeX automatically increases it
\renewcommand{\footrulewidth}{0pt} % Remove footer line
\renewcommand{\headrulewidth}{0pt} % Remove header line
\renewcommand{\seqinsert}{\ifmmode\allowbreak\else\-\fi} % Hyphens in seqsplit
% This two commands together give roughly
% the right line height in the tables
\renewcommand{\arraystretch}{1.3}
\onehalfspacing

% Commands
\newcommand{\SetRowColor}[1]{\noalign{\gdef\RowColorName{#1}}\rowcolor{\RowColorName}} % Shortcut for row colour
\newcommand{\mymulticolumn}[3]{\multicolumn{#1}{>{\columncolor{\RowColorName}}#2}{#3}} % For coloured multi-cols
\newcolumntype{x}[1]{>{\raggedright}p{#1}} % New column types for ragged-right paragraph columns
\newcommand{\tn}{\tabularnewline} % Required as custom column type in use

% Font and Colours
\definecolor{HeadBackground}{HTML}{333333}
\definecolor{FootBackground}{HTML}{666666}
\definecolor{TextColor}{HTML}{333333}
\definecolor{DarkBackground}{HTML}{30702B}
\definecolor{LightBackground}{HTML}{F2F6F1}
\renewcommand{\familydefault}{\sfdefault}
\color{TextColor}

% Header and Footer
\pagestyle{fancy}
\fancyhead{} % Set header to blank
\fancyfoot{} % Set footer to blank
\fancyhead[L]{
\noindent
\begin{multicols}{3}
\begin{tabulary}{5.8cm}{C}
    \SetRowColor{DarkBackground}
    \vspace{-7pt}
    {\parbox{\dimexpr\textwidth-2\fboxsep\relax}{\noindent
        \hspace*{-6pt}\includegraphics[width=5.8cm]{/web/www.cheatography.com/public/images/cheatography_logo.pdf}}
    }
\end{tabulary}
\columnbreak
\begin{tabulary}{11cm}{L}
    \vspace{-2pt}\large{\bf{\textcolor{DarkBackground}{\textrm{Génétique SBI4U Cheat Sheet}}}} \\
    \normalsize{by \textcolor{DarkBackground}{sarazemma} via \textcolor{DarkBackground}{\uline{cheatography.com/202991/cs/43164/}}}
\end{tabulary}
\end{multicols}}

\fancyfoot[L]{ \footnotesize
\noindent
\begin{multicols}{3}
\begin{tabulary}{5.8cm}{LL}
  \SetRowColor{FootBackground}
  \mymulticolumn{2}{p{5.377cm}}{\bf\textcolor{white}{Cheatographer}}  \\
  \vspace{-2pt}sarazemma \\
  \uline{cheatography.com/sarazemma} \\
  \end{tabulary}
\vfill
\columnbreak
\begin{tabulary}{5.8cm}{L}
  \SetRowColor{FootBackground}
  \mymulticolumn{1}{p{5.377cm}}{\bf\textcolor{white}{Cheat Sheet}}  \\
   \vspace{-2pt}Published 24th April, 2024.\\
   Updated 24th April, 2024.\\
   Page {\thepage} of \pageref{LastPage}.
\end{tabulary}
\vfill
\columnbreak
\begin{tabulary}{5.8cm}{L}
  \SetRowColor{FootBackground}
  \mymulticolumn{1}{p{5.377cm}}{\bf\textcolor{white}{Sponsor}}  \\
  \SetRowColor{white}
  \vspace{-5pt}
  %\includegraphics[width=48px,height=48px]{dave.jpeg}
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\end{tabulary}
\end{multicols}}




\begin{document}
\raggedright
\raggedcolumns

% Set font size to small. Switch to any value
% from this page to resize cheat sheet text:
% www.emerson.emory.edu/services/latex/latex_169.html
\footnotesize % Small font.

\begin{multicols*}{3}

\begin{tabularx}{5.377cm}{x{1.54287 cm} x{3.43413 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{\bf\textcolor{white}{Noms}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
Mendel & Concept des gènes dominants et récessifs \tn 
% Row Count 2 (+ 2)
% Row 1
\SetRowColor{white}
Miescher & Découverte de la nucléine, partie acide (acide nucléique) et partie alcaline (protéine) \tn 
% Row Count 6 (+ 4)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
Levene & Chaque molécule contient un sucre, une base azotée et un groupement phosphate \tn 
% Row Count 9 (+ 3)
% Row 3
\SetRowColor{white}
Chargraff & Règle de Chargraff: ratio 1:1 pour A/T et C/G \tn 
% Row Count 11 (+ 2)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
Rosalind \& Wilkins & Découvrent que les bases azotées sont hydrophobes et à l'intérieur de la structure \tn 
% Row Count 15 (+ 4)
% Row 5
\SetRowColor{white}
Watson \& Circk & Découverte de la relation des bases azotées avec des ponts hydrogène \tn 
% Row Count 18 (+ 3)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{5.377cm}{p{0.64701 cm} x{4.32999 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{\bf\textcolor{white}{Protéines}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
\seqsplit{Rôles} & Protection, régulation, mouvement, transport, énergie, influx nerveux, enzymes, structures \tn 
% Row Count 3 (+ 3)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{5.377cm}{p{0.54747 cm} x{4.42953 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{\bf\textcolor{white}{Code génétique}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
Codon & Chaque groupe de trois nucléotides ont les instructions pour faire un acide aminé/protéine \tn 
% Row Count 3 (+ 3)
% Row 1
\SetRowColor{white}
 & Les codons de l'ARN sont écrits dans le sens 5'-3' \tn 
% Row Count 5 (+ 2)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
Stop & UAA, UAG, UGA \tn 
% Row Count 6 (+ 1)
% Row 3
\SetRowColor{white}
Start & AUG \tn 
% Row Count 8 (+ 2)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{5.377cm}{p{0.4977 cm} p{0.4977 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{\bf\textcolor{white}{Mutations}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{Une mutation est une modification de l'ADN.} \tn 
% Row Count 1 (+ 1)
% Row 1
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{{\bf{Causes}}} \tn 
% Row Count 2 (+ 1)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{Agents mutagènes physiques: radiation, rayons-x, particules radioactives} \tn 
% Row Count 4 (+ 2)
% Row 3
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{Agents mutagènes chimiques: goudron de tabac, moisissures} \tn 
% Row Count 6 (+ 2)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{Virus et chaleur} \tn 
% Row Count 7 (+ 1)
% Row 5
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{{\bf{Types de mutations}}} \tn 
% Row Count 8 (+ 1)
% Row 6
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{Ponctuelles} \tn 
% Row Count 9 (+ 1)
% Row 7
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{{\bf{Substitution}} d'un nucléotide par un autre. Peut être silencieux ou non-sens (un codon devient un codon stop)} \tn 
% Row Count 12 (+ 3)
% Row 8
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{{\bf{Insertion}} d'un ou plusieurs nucléotides (frameshifting)} \tn 
% Row Count 14 (+ 2)
% Row 9
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{{\bf{Délétion}} d'un ou plusieurs nucléotides} \tn 
% Row Count 15 (+ 1)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{Insertion et délétion sont désastreux, car: \newline -tous les nucléotides sont changés, donc mutation = décalage du cadre de lecture \newline -cassure d'un chromosome = létales \newline -insertion d'une partie d'un chromosome sur un autre \newline -inversion d'ADN \newline -perte ou copies supplémentaires de chromosomes}  \tn 
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{5.377cm}{p{0.4977 cm} x{4.4793 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{\bf\textcolor{white}{Régulation de l'expression génétique}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{La régulationde l'expression génétique détermine si un gène est actif ou non, son niveau d'activité et la quantité de protéines disponibles dans la cellule. Les gènes domestiques sont dans toutes les cellules.} \tn 
% Row Count 5 (+ 5)
% Row 1
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{{\bf{Procaryotes}}} \tn 
% Row Count 6 (+ 1)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
 & Durant l'initiation \tn 
% Row Count 7 (+ 1)
% Row 3
\SetRowColor{white}
 & Durant la transcription \tn 
% Row Count 8 (+ 1)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
 & Après la synthèse des protéines \tn 
% Row Count 9 (+ 1)
% Row 5
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{{\bf{Eucaryotes}}} \tn 
% Row Count 10 (+ 1)
% Row 6
\SetRowColor{LightBackground}
 & Avant la transcription \tn 
% Row Count 11 (+ 1)
% Row 7
\SetRowColor{white}
 & Pendant la transcription \tn 
% Row Count 12 (+ 1)
% Row 8
\SetRowColor{LightBackground}
 & Après la transcription \tn 
% Row Count 13 (+ 1)
% Row 9
\SetRowColor{white}
 & Pendant la traduction \tn 
% Row Count 14 (+ 1)
% Row 10
\SetRowColor{LightBackground}
 & Après la traduction \tn 
% Row Count 15 (+ 1)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{Opéron: tous les gènes qui participent à une voie métabolique, rassemblés et contrôlés par un promoteur. Seulement dans les procaryotes (pour le moment) Ex. opéron LAC.}  \tn 
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{5.377cm}{p{0.4977 cm} p{0.4977 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{\bf\textcolor{white}{La génétique en laboratoire}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{On utilise les gènes marqueurs pour étudier la régulation des gènes. On ajoute ce gène pour mieux suivre les événements de transformations génétiques.} \tn 
% Row Count 4 (+ 4)
% Row 1
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{Les gènes marqueurs doivent êtres étrangers au génome, doivent produire une visualisation rapide et précise et le produit doit être quantifiable afin de mesure l'activité du promoteur.} \tn 
% Row Count 8 (+ 4)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{Les enzymes de restrictions sont présents chez les bactéries, et peuvent couperdes séquences spécifiques de l'ADN. Ils sont utilisés pour insérer de l'ADN exogène (étranger au génome) dans l'ADN. Cet nouvel ADN se nomme l'ADN recombinant.} \tn 
% Row Count 13 (+ 5)
% Row 3
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{Le clonage des gènes chez les bactéries se font avec les plasmides, un ADN circulaire d'origine synthétique ou bactérienne. Ces sites sont reconnus pas les enzymes de restrictions, permettant d'introduire du nouvel ADN.} \tn 
% Row Count 18 (+ 5)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{{\bf{Étapes de transfert de gène dans un plasmide}}} \tn 
% Row Count 19 (+ 1)
% Row 5
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{On extrait les plasmides des bactéries, puis une enzymes de restriction ouvre les plasmides.} \tn 
% Row Count 21 (+ 2)
% Row 6
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{On extrait le gène à greffer avec cet même enzyme de restriction, puis on mélange des copies du gène avec des plasmides. Une enzyme ligase fusionne les brins d'ARN.} \tn 
% Row Count 25 (+ 4)
% Row 7
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{Les plasmides sont ensuite réintroduits dans la bactérie, puis le gène se reproduit quand la bactérie se reproduit.} \tn 
% Row Count 28 (+ 3)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{5.377cm}{p{0.4977 cm} p{0.4977 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{\bf\textcolor{white}{La génétique en laboratoire}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{On utilise les gènes marqueurs pour étudier la régulation des gènes. On ajoute ce gène pour mieux suivre les événements de transformations génétiques.} \tn 
% Row Count 4 (+ 4)
% Row 1
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{Les gènes marqueurs doivent êtres étrangers au génome, doivent produire une visualisation rapide et précise et le produit doit être quantifiable afin de mesure l'activité du promoteur.} \tn 
% Row Count 8 (+ 4)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{Les enzymes de restrictions sont présents chez les bactéries, et peuvent couperdes séquences spécifiques de l'ADN. Ils sont utilisés pour insérer de l'ADN exogène (étranger au génome) dans l'ADN. Cet nouvel ADN se nomme l'ADN recombinant.} \tn 
% Row Count 13 (+ 5)
% Row 3
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{Le clonage des gènes chez les bactéries se font avec les plasmides, un ADN circulaire d'origine synthétique ou bactérienne. Ces sites sont reconnus pas les enzymes de restrictions, permettant d'introduire du nouvel ADN.} \tn 
% Row Count 18 (+ 5)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{{\bf{Étapes de transfert de gène dans un plasmide}}} \tn 
% Row Count 19 (+ 1)
% Row 5
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{On extrait les plasmides des bactéries, puis une enzymes de restriction ouvre les plasmides.} \tn 
% Row Count 21 (+ 2)
% Row 6
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{On extrait le gène à greffer avec cet même enzyme de restriction, puis on mélange des copies du gène avec des plasmides. Une enzyme ligase fusionne les brins d'ARN.} \tn 
% Row Count 25 (+ 4)
% Row 7
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{Les plasmides sont ensuite réintroduits dans la bactérie, puis le gène se reproduit quand la bactérie se reproduit.} \tn 
% Row Count 28 (+ 3)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{5.377cm}{x{1.59264 cm} x{3.38436 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{\bf\textcolor{white}{ADN}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
 & Acide Désoxyribonucléique \tn 
% Row Count 1 (+ 1)
% Row 1
\SetRowColor{white}
 & Chaines sont complémentaires (A et T, C et G) et {\emph{antiparallèles}} (une est 3'-5', l'autre est 5'-3') \tn 
% Row Count 5 (+ 4)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
Bases azotées & Adénine \& Thymine \tn 
% Row Count 7 (+ 2)
% Row 3
\SetRowColor{white}
 & Cytosine \& Guanine \tn 
% Row Count 8 (+ 1)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
Ponts phosphates & Lient les rampes \tn 
% Row Count 10 (+ 2)
% Row 5
\SetRowColor{white}
Liaisons hydrogène & Liaisons entre les paires de bases \tn 
% Row Count 12 (+ 2)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{Retrouvé dans le noyau, constitue le matériel génétique, dirige la synthèse de protéines, et se réplique avant la division cellulaire}  \tn 
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{5.377cm}{X}
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{1}{x{5.377cm}}{\bf\textcolor{white}{Organisation de l'ADN}}  \tn
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{1}{p{5.377cm}}{\vspace{1px}\centerline{\includegraphics[width=5.1cm]{/web/www.cheatography.com/public/uploads/sarazemma_1713823738_dna.png}}} \tn 
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}-}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{5.377cm}{x{2.4885 cm} x{2.4885 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{\bf\textcolor{white}{Réplication de l'ADN}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{{\bf{Initiation}}} \tn 
% Row Count 1 (+ 1)
% Row 1
\SetRowColor{white}
1. ADN hélicase & Sépare les deux brins pour former une bulle de réplication \tn 
% Row Count 4 (+ 3)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
2. SSB proteins & Ces protéines fixatrices empêchent les brins de s'enrouler \tn 
% Row Count 7 (+ 3)
% Row 3
\SetRowColor{white}
3. Topoisomérase II & Se place devant la fourche de réplication et réduit la tension créée par l'hélicase en déroulant l'ADN \tn 
% Row Count 13 (+ 6)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
4. Primase & Synthétise une amorce d'ARN au début de la fourche. Sert de point pour une autre enzyme, ADN polymérase III \tn 
% Row Count 19 (+ 6)
% Row 5
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{{\bf{Élongation}}} \tn 
% Row Count 20 (+ 1)
% Row 6
\SetRowColor{LightBackground}
5. ADN polymérase III & Regroupe les nucléotides avec leurs bases complémentaires (A/T, C/G) \tn 
% Row Count 24 (+ 4)
% Row 7
\SetRowColor{white}
6. Brin discontinu & Le brin 3'-5' se fait assembler par l'ADN polymérase III de l'autre côté, en fragments nommés "fragments d'Okazaki" \tn 
% Row Count 30 (+ 6)
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\vfill
\columnbreak
\begin{tabularx}{5.377cm}{x{2.4885 cm} x{2.4885 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{\bf\textcolor{white}{Réplication de l'ADN (cont)}}  \tn
% Row 8
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{{\bf{Terminaison}}} \tn 
% Row Count 1 (+ 1)
% Row 9
\SetRowColor{white}
7. ADN polymérase I & Remplace les ribonucléotides des amorces par des \seqsplit{désoxyribonucléotides}, donc le brin d'ARN devient un brin ADN \tn 
% Row Count 7 (+ 6)
% Row 10
\SetRowColor{LightBackground}
8. ADN ligase & Rattache les segments d'Okazaki \tn 
% Row Count 9 (+ 2)
% Row 11
\SetRowColor{white}
9. Double hélice & Automatiquement, les brins se s'enroulent en double hélice \tn 
% Row Count 12 (+ 3)
% Row 12
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{{\bf{Vérification et correction}}} \tn 
% Row Count 13 (+ 1)
% Row 13
\SetRowColor{white}
10. ADN polymérase III (enzyme de correction) & Vérifie les liaisons hydrogènes. Pas de liaison = mauvaise base, coupe cette base et la remplace par la bonne \tn 
% Row Count 19 (+ 6)
% Row 14
\SetRowColor{LightBackground}
12. Enzyme de réparation & Remplace les bases perdues naturellement par le corps \tn 
% Row Count 22 (+ 3)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{L'ADN polymérase lit dans le sens 3'-5', mais relie dans le sens 5'-3'. L'ADN polymérase I ne peut pas commencer au début de l'ADN, donc il y a des télomères (zones tampons) qui sont perdues afin d'éviter la perte de matériel génétique important.}  \tn 
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{5.377cm}{x{1.59264 cm} x{3.38436 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{\bf\textcolor{white}{Enzymes}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
Hélicase & Coupe et déroule ADN \tn 
% Row Count 1 (+ 1)
% Row 1
\SetRowColor{white}
Protéines SSB & Empêche les brins de se renrouler \tn 
% Row Count 3 (+ 2)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
\seqsplit{Topoisomérase} II & Réduit la tension créée par l'hélicase \tn 
% Row Count 5 (+ 2)
% Row 3
\SetRowColor{white}
Primase & Synthétise une amorce d'ARN, déclenche l'élongation \tn 
% Row Count 7 (+ 2)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
ADN polymérase III & Ajoute les nucléotides (extrémité 3') et vérifie que les bases sont correspondantes \tn 
% Row Count 11 (+ 4)
% Row 5
\SetRowColor{white}
ADN polymérase I & Défait l'amorce ARN, vérifie que lesb ases sont correspondantes \tn 
% Row Count 14 (+ 3)
% Row 6
\SetRowColor{LightBackground}
ADN ligase & Catalyse formation des ponts phosphates entre nucléotides; unit les fragments d'Okazaki \tn 
% Row Count 18 (+ 4)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{5.377cm}{p{0.4977 cm} x{4.4793 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{\bf\textcolor{white}{ARN}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
 & Acide ribonucléique \tn 
% Row Count 1 (+ 1)
% Row 1
\SetRowColor{white}
 & Un seul brin, nucléotides reliés par ponts phosphates \tn 
% Row Count 3 (+ 2)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
ARNt & ARN de transfert \tn 
% Row Count 4 (+ 1)
% Row 3
\SetRowColor{white}
ARNm & ARN messager \tn 
% Row Count 5 (+ 1)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
ARNr & ARN ribosomique \tn 
% Row Count 6 (+ 1)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{Retrouvé dans le cytoplasme, exécute les instructions génétiques pour synthétiser les protéines}  \tn 
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{5.377cm}{p{0.4977 cm} x{4.4793 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{\bf\textcolor{white}{Transcription de l'ARN}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{{\bf{Initiation}}} \tn 
% Row Count 1 (+ 1)
% Row 1
\SetRowColor{white}
 & Le promoteur sur le brin d'ADN permet l'attachement de l'ARN polymérase. On l'appèle la boîte TATA à cause qu'elle est riche en adénine et thymine. \tn 
% Row Count 6 (+ 5)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
 & La boîte TATA détermine le début de la transcription et quel brin sera codé. La liaison ADN/ARN permet d'ouvrir la douvle hélice et de catalyser l'insertion des ribonucléotides pour former un brin ARN. \tn 
% Row Count 12 (+ 6)
% Row 3
\SetRowColor{white}
 & Le brin est un transcrit primaire, complémentaire et antiparallèle du brin d'ADN. L'ARNm s'allonge à l'extrémité 3', et la polymérase fait la lecture 3'-5'. \tn 
% Row Count 17 (+ 5)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{{\bf{Élongation}}} \tn 
% Row Count 18 (+ 1)
% Row 5
\SetRowColor{white}
 & L'ARN polymérase lit le brin ADN non codant (template strand) de 3'-5', et créée l'ARN 5'-3'. \tn 
% Row Count 21 (+ 3)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{L'information pour la synthèse des protéines se retrouve dans le noyau, mais la synthèse arrive dans le cytoplasme. L'ADN ne peut pas sortir du noyau, donc on copie l'information sous forme d'ARN}  \tn 
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{5.377cm}{X}
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{1}{x{5.377cm}}{\bf\textcolor{white}{Élongation}}  \tn
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{1}{p{5.377cm}}{\vspace{1px}\centerline{\includegraphics[width=5.1cm]{/web/www.cheatography.com/public/uploads/sarazemma_1713835602_1da89713b9aa8067742244d916749e72561bb3cc.png}}} \tn 
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}-}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{5.377cm}{p{0.4977 cm} x{4.4793 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{\bf\textcolor{white}{Transcription de l'ARN (continué)}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{{\bf{Terminaison}}} \tn 
% Row Count 1 (+ 1)
% Row 1
\SetRowColor{white}
 & Ce processus continue jusqu'à ce qu'il rencontre un signal de terminaison. Le transcrit s'appèle le précurseur de l'ARNm. \tn 
% Row Count 5 (+ 4)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{{\bf{Maturation}}} \tn 
% Row Count 6 (+ 1)
% Row 3
\SetRowColor{white}
 & L'extrémité 5' est équipée d'une nucléotide G modifiée (coiffe), qui protège l'ARNm de la dégradation des enzymes \tn 
% Row Count 10 (+ 4)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
 & L'extrémité 3' a une chaine de nucléotides A, nommée queue poly-A, qui protège l'ARNm de la dégradation des enzymes \tn 
% Row Count 14 (+ 4)
% Row 5
\SetRowColor{white}
 & Le ribosome s'attache à la coiffe et la queue et forme un complexe circulaire. \tn 
% Row Count 17 (+ 3)
% Row 6
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{{\bf{Épissage}}} \tn 
% Row Count 18 (+ 1)
% Row 7
\SetRowColor{white}
 & Introns : séquence non codante (intrus) \tn 
% Row Count 20 (+ 2)
% Row 8
\SetRowColor{LightBackground}
 & Extrons : Parties codantes \tn 
% Row Count 21 (+ 1)
% Row 9
\SetRowColor{white}
 & Pendant la transcription, introns et exons sont copiés en ARNm. On les excise avec le spliceosome, qui reconnait certaines séquences des introns. \tn 
% Row Count 26 (+ 5)
% Row 10
\SetRowColor{LightBackground}
 & L'ARN produit est plus court et devient un ARNm ou ARNm mature. \tn 
% Row Count 28 (+ 2)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{5.377cm}{p{0.4977 cm} x{4.4793 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{\bf\textcolor{white}{Traduction de l'ARN}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
 & La synthèse de protéines se font dans les ribosomes. Ceux-ci sont constitués de deux sous-unités, une grande et une petite, avec 40\% de protéines et 60\% d'ARNr. \tn 
% Row Count 5 (+ 5)
% Row 1
\SetRowColor{white}
 & Chaque ribosome a un site de liaison pour le transcript d'ARNm, un site P (retient l'ARNt en la chaine en formation), A (retient l'ARNt porteur du prochain acide aminé en formation) et E (libère les molécules d'ARNt) \tn 
% Row Count 12 (+ 7)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
 & ARNt: brin d'ARN qui se replie pour former une structure 3D. Son extrémité 3' peut se lier à un acide aminé. Ils ont des anticodons, une zone formée de trois nucléotides qui peuvent de lier à l'ARNm \tn 
% Row Count 18 (+ 6)
% Row 3
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{{\bf{Initiation}}} \tn 
% Row Count 19 (+ 1)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
 & La molécule d'ARNm passe du noyau au cytoplasme \tn 
% Row Count 21 (+ 2)
% Row 5
\SetRowColor{white}
 & La petite sous-unité reconnait la séquence AUG (start) sur l'extrémité 5' de l'ARNm. L'ARNt méthionine ayant l'anticodon UAC se lie aussi au complexe ribosomique de l'ARNm. Ceci se lie au complexe ribosomique de l'ARNm. \tn 
% Row Count 28 (+ 7)
% Row 6
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{{\bf{Élongation}}} \tn 
% Row Count 29 (+ 1)
% Row 7
\SetRowColor{white}
 & Les trois bases de l'anticodon du complexe ARNt + aa s'apparient avec le codon correspondant sur le second site (site A). \tn 
% Row Count 33 (+ 4)
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\vfill
\columnbreak
\begin{tabularx}{5.377cm}{p{0.4977 cm} x{4.4793 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{\bf\textcolor{white}{Traduction de l'ARN (cont)}}  \tn
% Row 8
\SetRowColor{LightBackground}
 & Vérification des liens hydrogènes entre codon et anticodon. Les deux aa forment maintenant une liaison peptidique. \tn 
% Row Count 4 (+ 4)
% Row 9
\SetRowColor{white}
 & La chaine polypeptidique est transférée de l'ARNt du site P à l'ARN du site A, avant un décalage de trois codons (translocation) du ribosome. \tn 
% Row Count 9 (+ 5)
% Row 10
\SetRowColor{LightBackground}
 & Ces étapes se répètent jusqu'à un codon STOP. \tn 
% Row Count 11 (+ 2)
% Row 11
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{{\bf{Terminaison}}} \tn 
% Row Count 12 (+ 1)
% Row 12
\SetRowColor{LightBackground}
 & Lorsque le ribosome atteint un codon stop, une enzyme (facteur de terminaison) s'y fixe et ajoute une molécule d'eau au lieu d'un aa, ce qui détache la chaine de polypeptides. Le ribosome se sépare ensuite en deux. \tn 
% Row Count 19 (+ 7)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{5.377cm}}{START: AUG \newline STOP: UAA, UAG, UGA}  \tn 
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}


% That's all folks
\end{multicols*}

\end{document}