\documentclass[10pt,a4paper]{article}

% Packages
\usepackage{fancyhdr}           % For header and footer
\usepackage{multicol}           % Allows multicols in tables
\usepackage{tabularx}           % Intelligent column widths
\usepackage{tabulary}           % Used in header and footer
\usepackage{hhline}             % Border under tables
\usepackage{graphicx}           % For images
\usepackage{xcolor}             % For hex colours
%\usepackage[utf8x]{inputenc}    % For unicode character support
\usepackage[T1]{fontenc}        % Without this we get weird character replacements
\usepackage{colortbl}           % For coloured tables
\usepackage{setspace}           % For line height
\usepackage{lastpage}           % Needed for total page number
\usepackage{seqsplit}           % Splits long words.
%\usepackage{opensans}          % Can't make this work so far. Shame. Would be lovely.
\usepackage[normalem]{ulem}     % For underlining links
% Most of the following are not required for the majority
% of cheat sheets but are needed for some symbol support.
\usepackage{amsmath}            % Symbols
\usepackage{MnSymbol}           % Symbols
\usepackage{wasysym}            % Symbols
%\usepackage[english,german,french,spanish,italian]{babel}              % Languages

% Document Info
\author{ilpatino2003}
\pdfinfo{
  /Title (parcial-4-biomol-traduccion-y-proteinas.pdf)
  /Creator (Cheatography)
  /Author (ilpatino2003)
  /Subject (Parcial 4 - biomol - traduccion y proteinas Cheat Sheet)
}

% Lengths and widths
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\addtolength{\textheight}{-1cm}
\addtolength{\hoffset}{-3cm}
\addtolength{\voffset}{-2cm}
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\setlength{\headsep}{-12pt} % Reduce space between header and content
\setlength{\headheight}{85pt} % If less, LaTeX automatically increases it
\renewcommand{\footrulewidth}{0pt} % Remove footer line
\renewcommand{\headrulewidth}{0pt} % Remove header line
\renewcommand{\seqinsert}{\ifmmode\allowbreak\else\-\fi} % Hyphens in seqsplit
% This two commands together give roughly
% the right line height in the tables
\renewcommand{\arraystretch}{1.3}
\onehalfspacing

% Commands
\newcommand{\SetRowColor}[1]{\noalign{\gdef\RowColorName{#1}}\rowcolor{\RowColorName}} % Shortcut for row colour
\newcommand{\mymulticolumn}[3]{\multicolumn{#1}{>{\columncolor{\RowColorName}}#2}{#3}} % For coloured multi-cols
\newcolumntype{x}[1]{>{\raggedright}p{#1}} % New column types for ragged-right paragraph columns
\newcommand{\tn}{\tabularnewline} % Required as custom column type in use

% Font and Colours
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\color{TextColor}

% Header and Footer
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\fancyhead{} % Set header to blank
\fancyfoot{} % Set footer to blank
\fancyhead[L]{
\noindent
\begin{multicols}{3}
\begin{tabulary}{5.8cm}{C}
    \SetRowColor{DarkBackground}
    \vspace{-7pt}
    {\parbox{\dimexpr\textwidth-2\fboxsep\relax}{\noindent
        \hspace*{-6pt}\includegraphics[width=5.8cm]{/web/www.cheatography.com/public/images/cheatography_logo.pdf}}
    }
\end{tabulary}
\columnbreak
\begin{tabulary}{11cm}{L}
    \vspace{-2pt}\large{\bf{\textcolor{DarkBackground}{\textrm{Parcial 4 - biomol - traduccion y proteinas Cheat Sheet}}}} \\
    \normalsize{by \textcolor{DarkBackground}{ilpatino2003} via \textcolor{DarkBackground}{\uline{cheatography.com/185342/cs/38731/}}}
\end{tabulary}
\end{multicols}}

\fancyfoot[L]{ \footnotesize
\noindent
\begin{multicols}{3}
\begin{tabulary}{5.8cm}{LL}
  \SetRowColor{FootBackground}
  \mymulticolumn{2}{p{5.377cm}}{\bf\textcolor{white}{Cheatographer}}  \\
  \vspace{-2pt}ilpatino2003 \\
  \uline{cheatography.com/ilpatino2003} \\
  \end{tabulary}
\vfill
\columnbreak
\begin{tabulary}{5.8cm}{L}
  \SetRowColor{FootBackground}
  \mymulticolumn{1}{p{5.377cm}}{\bf\textcolor{white}{Cheat Sheet}}  \\
   \vspace{-2pt}Published 23rd May, 2023.\\
   Updated 23rd May, 2023.\\
   Page {\thepage} of \pageref{LastPage}.
\end{tabulary}
\vfill
\columnbreak
\begin{tabulary}{5.8cm}{L}
  \SetRowColor{FootBackground}
  \mymulticolumn{1}{p{5.377cm}}{\bf\textcolor{white}{Sponsor}}  \\
  \SetRowColor{white}
  \vspace{-5pt}
  %\includegraphics[width=48px,height=48px]{dave.jpeg}
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\end{tabulary}
\end{multicols}}




\begin{document}
\raggedright
\raggedcolumns

% Set font size to small. Switch to any value
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% www.emerson.emory.edu/services/latex/latex_169.html
\footnotesize % Small font.

\begin{multicols*}{4}

\begin{tabularx}{3.833cm}{p{0.3433 cm} p{0.3433 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\bf\textcolor{white}{Translation - things to know before going in}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{{\bf{Purpose}}: interpret gene info in mARN (codons) to generate proteins.} \tn 
% Row Count 2 (+ 2)
% Row 1
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{{\bf{Characteristics}}:  (1) highly conserved process across organisms; (2) energetically costly (bacteria: takes up 80\% of the cells energy and 50\% of it's dry weight.); (3) synthesis of a single protein requires the coordinated action of over a 100 proteins and RNAs.} \tn 
% Row Count 8 (+ 6)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{{\bf{Challenges in translation}}: (1) it is harder to transfer genetic info during translation vs transcription; (2) aminoacids have little to no affinity for for nitrogen bases (no direct contact with the mRNA strand), especially if the amino acids are aromatic} \tn 
% Row Count 14 (+ 6)
% Row 3
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{{\bf{Crick's Theory}}: There is a RNA molecule pasting AA (amino acids). Paul C. Zamecnik and Mahlon B. Hoagland proved that there is a certain type of ARN molecule to AA attach to before being transferred to the polypeptide chain (tARN)} \tn 
% Row Count 19 (+ 5)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{3.833cm}{p{0.3433 cm} p{0.3433 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\bf\textcolor{white}{Carga de los AA}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- se cargan mediante las aminoacil-ARNt sintetasas y la hidrolisis de dos ATP (uno remueve el PPi y el segundo hidroliza el PPi a dos acidos fosforicos inorganicos con la ayuda de una pirofosfatasa)} \tn 
% Row Count 4 (+ 4)
% Row 1
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- lo anterior permite que el AA se una a su ARNt especifico} \tn 
% Row Count 6 (+ 2)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- AA al cargarse al ARNt libera un AMP + 2Pi y a la enzima} \tn 
% Row Count 8 (+ 2)
% Row 3
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- complejo aminoacil-ARNt formado} \tn 
% Row Count 9 (+ 1)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{3.833cm}{x{2.30011 cm} x{1.13289 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\bf\textcolor{white}{Binding of the ribosome}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
{\emph{Prokaryotes}}: Shine-Dalgarno sequence (RBS) & {\emph{Eukaryotes}}: 5' cap \tn 
% Row Count 2 (+ 2)
% Row 1
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{Because {\emph{prokaryotes}} have mARN that codes for many proteins, it creates a phenomenon called {\bf{polirribosome}}} \tn 
% Row Count 5 (+ 3)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{IMAGE: \seqsplit{https://www.google.com/url?sa=i\&url=https\%3A\%2F\%2Fwww.researchgate.net\%2Ffigure\%2FA-Mechanistic-Model-of-Translational-Coupling-A-Translation-of-a-bi-cistronic\_fig1\_279299914\&psig=AOvVaw3JghWDHE\_Vhq8Ccdvtp0E3\&ust=1684296451282000\&source=images\&cd=vfe\&ved=2ahUKEwj96dWu-\_j-AhXrXDABHcmNANcQr4kDegUIARDFAQ}} \tn 
% Row Count 12 (+ 7)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{3.833cm}{x{1.7165 cm} x{1.7165 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\bf\textcolor{white}{Features that stimulate translation}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
{\bf{Prokaryotes}}: (1) RBS (Shine-Dalgarno); (2) Kozak sequence & (1) 5'-AGGAGG-3'; (2) 5'-ANNAUGG-3': interacts with the initiator tARN instead of the ribosome (unlike eukaryotes.) \tn 
% Row Count 6 (+ 6)
% Row 1
\SetRowColor{white}
{\bf{Eukaryotes}}: (1) 5' cap; (2) Kozak sequence; (3) poly-A tail & (1) connected to the 5' end of mARN through 3 phosphate groups. Unusual 5' to 5' linkage; (2) 5'-ANNAUGG-3': it's presence makes translation more effective although some mARNs lack it; (3) added enzymatically. enhances level of translation and prevents the lost of information. \tn 
% Row Count 20 (+ 14)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{3.833cm}{p{0.3433 cm} p{0.3433 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\bf\textcolor{white}{Iniciacion - traduccion}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{(1) {\bf{union de la subunidad menor del ribosoma al ARNm}} a traves del ARNr con ayuda de factores de iniciacion} \tn 
% Row Count 3 (+ 3)
% Row 1
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{(2) {\bf{el ARNt iniciador con una metionina o formil-metionina entra al sitio P}} (el unico en poder hacerlo) y reconoce al codon AUG e inicia la traduccion. el reconocimiento del sitio P esta mediado por el IF-3 o eIF-4} \tn 
% Row Count 8 (+ 5)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{(3) {\bf{el IF-2 se asocia con el GTP y estabiliza al ARNt con el complejo ribosomal}} si el codon y anticodon es complementario, hidrolizando al GTP} \tn 
% Row Count 11 (+ 3)
% Row 3
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{union del ribosoma al ARNm} \tn 
% Row Count 12 (+ 1)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- {\bf{bacterias}}: secuencia SHine-Dalgarno (RBS) en el ARNm} \tn 
% Row Count 14 (+ 2)
% Row 5
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- {\bf{eucariotas}}: secuencia Kozak en ARNm} \tn 
% Row Count 15 (+ 1)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{Nota:  \newline + formil-metionina y IF-3  - pro \newline + metionina y eIF-4 - eu \newline + la fase esta se termina cuando se arma el complejo ribosoma y la union anticodon-codon}  \tn 
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{3.833cm}{p{0.3433 cm} p{0.3433 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\bf\textcolor{white}{Enlongacion}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{{\bf{Formacion de enlaces peptidicos}}: el radical carboxilo (-COOH) del AA iniciador se une con el radical amino (NH2) del siguiente AA} \tn 
% Row Count 3 (+ 3)
% Row 1
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{{\bf{Catalizador de enlaces peptidicos}}: enzima peptidil-transferasa} \tn 
% Row Count 5 (+ 2)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{(1) {\bf{decodificacion del aminoacil-ARNt en el sitio A}}} \tn 
% Row Count 7 (+ 2)
% Row 3
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{(2) {\bf{Transferencia del AA al peptidil-ARNt}}} \tn 
% Row Count 8 (+ 1)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{(3) {\bf{desplazamiento del ribosoma}}} \tn 
% Row Count 9 (+ 1)
% Row 5
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{{\bf{3 en 1}}: Se vuelve a hidrolizar un GTP originado en la proteina EF-G o EF-2 que permite la traslocación del ribosoma hacia el extremo 3' del ARNm el cual se da cuando el sitio P se encuentra ocupado por un ARNt sin AA lo cual provoca estre desplazamiento y su colocacion en el sitio E.} \tn 
% Row Count 15 (+ 6)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{{\bf{Notas}} \newline + EF-G - bacterias \newline + EF-2 - eucariotas  \newline + La enlongacion es un proceso ciclico en donde un ARNt sin AA se reemplaza por uno que este cargado y corresponda al siguiente codon del ARNm.}  \tn 
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{3.833cm}{p{0.3433 cm} p{0.3433 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\bf\textcolor{white}{Terminacion}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- Se da cuando se lee en el sitio A uno o mas tripletes sin sentido en el ARNm que no codifican para AA.} \tn 
% Row Count 3 (+ 3)
% Row 1
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- los factores de liberacion reconocen al codon de terminacion y necesitan de una molecula de GTP para liberar a la cadena polipeptidica del complejo traduccional (ARNm + ribosoma) y se disocie la union entre ARNm y ARNr} \tn 
% Row Count 8 (+ 5)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\{a\} {\bf{Factores clase I}}: especificos de codon (RFR-1 y 2 para pro, y eRF1 para eu)} \tn 
% Row Count 10 (+ 2)
% Row 3
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\{b\} {\bf{Factores clase II}}: no especificos que unen un nucleotido G (RF-3 en pro, eRF-3 en eu)} \tn 
% Row Count 12 (+ 2)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{(1) {\bf{los Rf reconocen al codon de terminacion, el centro de transferencia del enlace pep}} dentro del ribosoma  llamado dominio V localizado en la subunidad mayor del ribosoma, lo que permite la liberacion de la cadena peptidica del ARNt} \tn 
% Row Count 17 (+ 5)
% Row 5
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{(2) el complejo traduccional se disocia por el factor de reciclaje del ribosoma que permite que el ribosoma, ARNt y factores de liberacion se vuelvan a usar en otra sintesis proteica. tambien el ARNm queda libre y se puede leer de nuevo.} \tn 
% Row Count 22 (+ 5)
% Row 6
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- {\bf{eucariotas}}: factor de liberacion (factor de reciclaje del ribosoma} \tn 
% Row Count 24 (+ 2)
% Row 7
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- {\bf{bacterias}}: RRF por sus siglas en ingles (factor de reciclaje del ribosoma)} \tn 
% Row Count 26 (+ 2)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{3.833cm}{p{0.3433 cm} p{0.3433 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\bf\textcolor{white}{Prenilacion (terpenos)- modificaciones con lipids}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{{\bf{isoprenoides}}: geranilo (10C) y farnesil (15C) de la via del colesterol del met. se unen a residuos de C en el extremo C-terminal con un enlace tioeter (C-S-C)} \tn 
% Row Count 4 (+ 4)
% Row 1
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{{\bf{secuencia concenso comun en el extremo C-terminal}}: CAAX (cisteina-aa-aa-aa C-terminal).} \tn 
% Row Count 6 (+ 2)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- para que la prenilacion ocurra se retiran los tres AA (AAX), se une el grupo prenilado y el carboxilato de la C se metila con SAM como donante.} \tn 
% Row Count 9 (+ 3)
% Row 3
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{{\bf{grupos prenilados}}: geranilo (10C), farnesil (15C) y gerarilgenarnilo (20C)} \tn 
% Row Count 11 (+ 2)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- ellos se unen a proteinas receptoras unicamente} \tn 
% Row Count 12 (+ 1)
% Row 5
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- proteinas de la respuesta inmune (motilidad, activacion y proliferacion de leucocitos)} \tn 
% Row Count 14 (+ 2)
% Row 6
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- {\emph{farnesilo}}: proteinas ligadoras e hidrolizantes de GTP (RAS) y proteinas G (se unen e hidrolizan GTP en cascadas de señalizacion intracel.)  base de las proteinas antiinflamatorias de farmacos INH de colesterol, disminuyen la sintesis de farnesil-piroP y genaril piroP, reduciendo episodios inflamatorios} \tn 
% Row Count 21 (+ 7)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{3.833cm}{p{0.3433 cm} p{0.3433 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\bf\textcolor{white}{INH de sintesis proteica}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- las proteinas que INH son antibioticos en bacterias} \tn 
% Row Count 2 (+ 2)
% Row 1
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{{\bf{Agrupaciones}}} \tn 
% Row Count 3 (+ 1)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{(a) INH del reconocimiento de un aminoacil-ARNt en el sitio A del ribosoma: {\bf{tetraciclinas}}} \tn 
% Row Count 5 (+ 2)
% Row 3
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{(b) Induccion de presencia de errores en la lectura del ARNm: {\bf{aminoglucosidos (estreptomicina)}}} \tn 
% Row Count 7 (+ 2)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{(c) INH de la formacion del enlace peptidico: {\bf{puromicina}}} \tn 
% Row Count 9 (+ 2)
% Row 5
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{(d) INH de la traslocacion del peptidil-ARNt desde el sitio A al P: {\bf{Macrolidos y lincosamidas}}} \tn 
% Row Count 11 (+ 2)
% Row 6
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{(e) Bloqueo de factores de elongacion: {\bf{cloranfenicol}}} \tn 
% Row Count 13 (+ 2)
% Row 7
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{} \tn 
% Row Count 13 (+ 0)
% Row 8
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{} \tn 
% Row Count 13 (+ 0)
% Row 9
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{} \tn 
% Row Count 13 (+ 0)
% Row 10
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{} \tn 
% Row Count 13 (+ 0)
% Row 11
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{} \tn 
% Row Count 13 (+ 0)
% Row 12
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{} \tn 
% Row Count 13 (+ 0)
% Row 13
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{} \tn 
% Row Count 13 (+ 0)
% Row 14
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{} \tn 
% Row Count 13 (+ 0)
% Row 15
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{} \tn 
% Row Count 13 (+ 0)
% Row 16
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{} \tn 
% Row Count 13 (+ 0)
% Row 17
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{} \tn 
% Row Count 13 (+ 0)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{3.833cm}{x{1.75083 cm} x{1.68217 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\bf\textcolor{white}{Terms - glossary}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
{\bf{Polycistronic}}: more than one ORF in the mARN & {\bf{Monocystronic}}: one ORF in the mARN \tn 
% Row Count 3 (+ 3)
% Row 1
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{{\bf{Translational coupling}}: can cause mutations when upsteam bases are not translated before downstream ones} \tn 
% Row Count 6 (+ 3)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{3.833cm}{x{1.7165 cm} x{1.7165 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\bf\textcolor{white}{ORFs - Open Reading Frames}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{It is a string of composed, contigous, non-overlapping codons} \tn 
% Row Count 2 (+ 2)
% Row 1
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{every mARN has them} \tn 
% Row Count 3 (+ 1)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{cada ORF specifies an especific protein and ends inside of the mARN (the mARN can have more than one ORF)} \tn 
% Row Count 6 (+ 3)
% Row 3
\SetRowColor{white}
va de codon de inicio hasta codon de terminacion y hay muchas maneras en las que puede acabar el reading frame dependiendo de donde este ubicado el codon de terminación & {\bf{Functions of the start codon}}: (1) encorporates the first AA into the polypeptide chain; (2) it defines location of all the other codons in the sequence \tn 
% Row Count 15 (+ 9)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
Eucariots always start wit AUG, but bacteria may start with that or GUG/UUG. & Any stretch of mARN can be read in different ways due to the length of the codons and because they are not overlapping each other \tn 
% Row Count 22 (+ 7)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{3.833cm}{p{0.3433 cm} p{0.3433 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\bf\textcolor{white}{trafico o destino de las proteinas - topogenesis}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- ruta que siguen las proteinas en la celula hasta alcanzar su localizacion intra o extracelular donde ejercen su funcion.} \tn 
% Row Count 3 (+ 3)
% Row 1
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- la topogenesis se realiza en el citosol donde participan varios organelos (RER, AG, Mt, peroxisomas y lisosomas)} \tn 
% Row Count 6 (+ 3)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- todas las proteinas que van a algun organelo o al mismo citosol van al citoplasma para recibir su secuencia señal de donde deben dirigirse} \tn 
% Row Count 9 (+ 3)
% Row 3
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- las peptido señales indican si la proteina es de membrana, lisosomal, de secrecion, etc. y las que no tienen ninguna señal se quedan en el citosol} \tn 
% Row Count 12 (+ 3)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- la peptido señal se sintetiza durante la sintesis de proteinas} \tn 
% Row Count 14 (+ 2)
% Row 5
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- las peptido señales son secuencias cortas de AA normalmente ubicados en el extremo N-terminal que marca a la proteina recien sintetizada} \tn 
% Row Count 17 (+ 3)
% Row 6
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- la peptido señal tiene tres secciones: uno o mas AA en el extremo N-termina, seis o siete AA hidrofobicos en la region central y la parte C-terminal hidrofila reconocida y cortada por una peptidasa del lider.} \tn 
% Row Count 22 (+ 5)
% Row 7
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{{\bf{Mecanismo de accion}}: (1) la sintesis de proteinas de secrecion inicia en ribosomas citosolicos. su secuencia señal sale del ribosoma y se une inmediatamente a la perticula de reconocimiento señal (SRP) que se encuentra en el RER e interrumpe momentaneamente la sintesis proteica, disociando al ribosoma y la sintesis se reinicia. este proceso requiere de GTP.} \tn 
% Row Count 30 (+ 8)
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\vfill
\columnbreak
\begin{tabularx}{3.833cm}{p{0.3433 cm} p{0.3433 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\bf\textcolor{white}{trafico o destino de las proteinas - topogenesis (cont)}}  \tn
% Row 8
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{(2) la SRP es una ribonucleoproteina formada por seis polipeptidos y un scARN.} \tn 
% Row Count 2 (+ 2)
% Row 9
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{(3) la proteina TRAM (traslocacion a traves de la membrana) se une a la peptido señal y junto a las Sec (A, Y y E) forman el complejo de traslocacion que lleva a la proteina adentro del RER.} \tn 
% Row Count 6 (+ 4)
% Row 10
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{(4) la peptido señal es eliminada por escicion proteolica (peptidasa)} \tn 
% Row Count 8 (+ 2)
% Row 11
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{(5) se disocia el ribosoma de la membrana y se renueva el ciclo} \tn 
% Row Count 10 (+ 2)
% Row 12
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- algunas proteinas pueden atravesar la membrana del RER y mientras eso pasa se utilizan una o mas proteinas para mantenerla desnaturalizada (parcial o totalmente) mientras pasa} \tn 
% Row Count 14 (+ 4)
% Row 13
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{Trafico intracelular: las proteinas de secrecion se destacan mas aqui y ocurre a traves de la membrana del RE y el AG.} \tn 
% Row Count 17 (+ 3)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{3.833cm}{p{0.3433 cm} p{0.3433 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\bf\textcolor{white}{Acetilacion}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- N-terminal normalmente} \tn 
% Row Count 1 (+ 1)
% Row 1
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- metionina (indicador) es hidroxilada y un grupo acetilo se agrega al nuevo AA N-terminal} \tn 
% Row Count 3 (+ 2)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- ocurre en 50\% de las proteinas eucariotas} \tn 
% Row Count 4 (+ 1)
% Row 3
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- resistente a su degradacion} \tn 
% Row Count 5 (+ 1)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- acetilacion reversible de la histona H4, lo cual regula la condensacion de la cromatina} \tn 
% Row Count 7 (+ 2)
% Row 5
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{{\bf{Donador}} Acetil-CoA y miristoil-CoA} \tn 
% Row Count 8 (+ 1)
% Row 6
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- grupo miristoil de 14 C en N-terminal lo cual permite la asociacion de la proteina modificada con las membranas} \tn 
% Row Count 11 (+ 3)
% Row 7
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- subunidad catalitica de la proteincinasa dependiente del cAMP (PKA) miristoilado} \tn 
% Row Count 13 (+ 2)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{3.833cm}{p{0.3433 cm} x{3.0897 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\bf\textcolor{white}{Modificaciones post-traduc. - razones}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
 & DONDE OCCURREN: la mayoria ocurre en la N-terminal de la proteina \tn 
% Row Count 2 (+ 2)
% Row 1
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\{1\} {\bf{estabilidad}}: las protege de la degradacion y desnaturalizacion} \tn 
% Row Count 4 (+ 2)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\{2{]} {\bf{ actividad enzimatica}}: activa o desactiva enzimas debido a cambios aen la estructura tridimensional i interaccion con otros componentes celulares} \tn 
% Row Count 8 (+ 4)
% Row 3
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\{3\} {\bf{localizacion subcelular o topogenesis}} les dice a las proteinas si ir al nucleo o RER, por ejemplo} \tn 
% Row Count 11 (+ 3)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\{4\} {\bf{interacciones proteina-proteina}}: afecta interacciones entre proteinas} \tn 
% Row Count 13 (+ 2)
% Row 5
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\{5\} {\bf{activacion biologica}}: union a sustratos o regulacion de las vias de señalizacion intracelular} \tn 
% Row Count 16 (+ 3)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{3.833cm}{p{0.3433 cm} p{0.3433 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\bf\textcolor{white}{Carboxilacion}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{Carboxilacion} \tn 
% Row Count 1 (+ 1)
% Row 1
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- se añade un CH+2 a la cadena lateral de un AA del D (beta-carboxiaspartato) o del E (gamma-carboxiglutamato} \tn 
% Row Count 4 (+ 3)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- es esencial para la trombina como factor de coagulacion por su accion quelante hacia el Ca+2.} \tn 
% Row Count 6 (+ 2)
% Row 3
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\_ la vitamina K es cofactor de la carboxilacion del E, sin el se genera el sindrome hemorragico.} \tn 
% Row Count 8 (+ 2)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{3.833cm}{x{1.68217 cm} x{1.75083 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\bf\textcolor{white}{Metilacion}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- ocurre en N (permanente en mamiferos) y O (reversible)} \tn 
% Row Count 2 (+ 2)
% Row 1
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{{\bf{Donador}}: S-adenosilmetionina (SAM)} \tn 
% Row Count 3 (+ 1)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- {\bf{estabilidad}}} \tn 
% Row Count 4 (+ 1)
% Row 3
\SetRowColor{white}
{\bf{Metilaciones comunes en N}} & {\bf{Metilaciones comunes en O}} \tn 
% Row Count 6 (+ 2)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
- epsilon-amina de residuos de lisisna & - grupos R de E y D, formando esteres metilados \tn 
% Row Count 9 (+ 3)
% Row 5
\SetRowColor{white}
- anillo imidasolico de la histidina & - grupos R-tioles de la C en proteinas \tn 
% Row Count 11 (+ 2)
% Row 6
\SetRowColor{LightBackground}
- grupo guanino de la R & - metilacion de la H4 en histonas para la estructura de la cromatina y actividad transcripcional; K-20 de las H4 en miocitos (monometil y dimetil-K) \tn 
% Row Count 19 (+ 8)
% Row 7
\SetRowColor{white}
- grupos R de E y D & - metilacion de las H4 en el citocromo C (monometil y dimetil-K \tn 
% Row Count 23 (+ 4)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{3.833cm}{p{0.3433 cm} p{0.3433 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\bf\textcolor{white}{Acilacion - modificaciones con lipids}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- proteinas citosolicas insolubles sintetizadas en ribosom as libres} \tn 
% Row Count 2 (+ 2)
% Row 1
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- afecta cadenas laterales y/o extremos del polipeptido} \tn 
% Row Count 4 (+ 2)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- aumento de hidrofobia} \tn 
% Row Count 5 (+ 1)
% Row 3
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- proporciona punto de anclaje de la proteina} \tn 
% Row Count 6 (+ 1)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{{\bf{Acidos G usados}}\_ miristato (14C), ´´almitato (16C), esterato u oleato (18C)} \tn 
% Row Count 8 (+ 2)
% Row 5
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- ocurre en S y T, formando un enlace ester con el grupo -OH} \tn 
% Row Count 10 (+ 2)
% Row 6
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- ocurre en C formando un enlace tioster con el SH} \tn 
% Row Count 11 (+ 1)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{3.833cm}{p{0.3433 cm} p{0.3433 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\bf\textcolor{white}{Recorte}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- procesamiento proteolico} \tn 
% Row Count 1 (+ 1)
% Row 1
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- mas comun de todas las modificaciones} \tn 
% Row Count 2 (+ 1)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- lamayoria de proteinas maduras passan por este proceso} \tn 
% Row Count 4 (+ 2)
% Row 3
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- se les recorta el grupo metilo (o-M) despues de emerger del ribosoma para su activacion mediante la proteolisis limitada} \tn 
% Row Count 7 (+ 3)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- presursores inactivos -\textgreater{}proteolisis limitada-\textgreater{}proteina funcional} \tn 
% Row Count 9 (+ 2)
% Row 5
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- EJ: Tripsogeno-\textgreater{} tripsina} \tn 
% Row Count 10 (+ 1)
% Row 6
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{{\bf{proteinas inactivas}}: proproteinas} \tn 
% Row Count 11 (+ 1)
% Row 7
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{{\bf{proteinas activas/segmentos extraidos}}:propeptidos} \tn 
% Row Count 13 (+ 2)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{3.833cm}{p{0.3433 cm} p{0.3433 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\bf\textcolor{white}{Hipotesis de bamboleo}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{reglas} \tn 
% Row Count 1 (+ 1)
% Row 1
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{(1) la segunda y terca base del anticodon se un a la primera y segunda del codon mediante puentes de hidrogeno lo cual genera la especificidad de la interaccion codon/anticodon} \tn 
% Row Count 5 (+ 4)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{(2) el bamboleo o fluctuacion se da cuando la primera base del anticodon se orienta o gira de maneras ligeramente distintas} \tn 
% Row Count 8 (+ 3)
% Row 3
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{{\bf{notas}}} \tn 
% Row Count 9 (+ 1)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- creada por Watson y Crick} \tn 
% Row Count 10 (+ 1)
% Row 5
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- ocurre entre la tercera base del codon y la primera del codon} \tn 
% Row Count 12 (+ 2)
% Row 6
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- las reglas surgen de la teoria de que el primer nucleotido del anticodon puede complementarse con mas de un nucleotido en la tercera posicion del codon (ej, U se une a A o G)} \tn 
% Row Count 16 (+ 4)
% Row 7
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- si posee un ARNt una inosina en la posicion 3 puede reconocer codones que terminan con C, U o A} \tn 
% Row Count 18 (+ 2)
% Row 8
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- una G en la posicion 3 se une a codones que terminen con U o A} \tn 
% Row Count 20 (+ 2)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{3.833cm}{p{0.3433 cm} p{0.3433 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\bf\textcolor{white}{Translation Machinery}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{1) mARN: template for translation} \tn 
% Row Count 1 (+ 1)
% Row 1
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{2) tARN: provides physical interface between mARN and AA} \tn 
% Row Count 3 (+ 2)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{3) aminoacil sintetasa: montan a los AA a tARN especificos que reconocen a su AA montado encima} \tn 
% Row Count 5 (+ 2)
% Row 3
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{4) ribosome: (a) compuesto por mARN y proteina; (b) multimegalodalton machinery; (c) coordina el reconocimiento correcto de los codones de mARN hecho por cada ARNt; (d) cataliza la formacion de enlaces peptidicos entre la cadena peptidica creciente y el AA añadido en la secuencia} \tn 
% Row Count 11 (+ 6)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{3.833cm}{p{0.3433 cm} x{3.0897 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\bf\textcolor{white}{mARN}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
 & - contiene el orden especifico de cada AA en la cadena polipeptidica \tn 
% Row Count 2 (+ 2)
% Row 1
\SetRowColor{white}
 & {\bf{Notas}} \tn 
% Row Count 3 (+ 1)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
 & - lleva info gen del nucleo a los ribosomas del citoplasma para la sintesis proteica \tn 
% Row Count 6 (+ 3)
% Row 3
\SetRowColor{white}
 & - esta estructurado por tripletes conformados por bases ribonucleicas \tn 
% Row Count 8 (+ 2)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{3.833cm}{p{0.3433 cm} p{0.3433 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\bf\textcolor{white}{tARN}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- There is a diffferent type for each AA as one type recognizes one AA} \tn 
% Row Count 2 (+ 2)
% Row 1
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- 75 and 95 ribonucleotides in length} \tn 
% Row Count 3 (+ 1)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- ends with 5'-CCA-3' in the acceptor arm for an AA to join} \tn 
% Row Count 5 (+ 2)
% Row 3
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- Presence of odd nitrogen bases (pseudouridine, dehydrouridine, etc)} \tn 
% Row Count 7 (+ 2)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- Variable loop is 3-21 nucleotides in length} \tn 
% Row Count 8 (+ 1)
% Row 5
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- U loop: pseudouridine} \tn 
% Row Count 9 (+ 1)
% Row 6
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- D loop: dihidrouridina} \tn 
% Row Count 10 (+ 1)
% Row 7
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- Anticodon region: recognizes an mARN's codon secuence by base pairing (3'-purine; 5'-uracil)} \tn 
% Row Count 12 (+ 2)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{3.833cm}{p{0.3433 cm} p{0.3433 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\bf\textcolor{white}{Aminoacil transferasa}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- es una enzima encargada de montar AA a los ARNt} \tn 
% Row Count 1 (+ 1)
% Row 1
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- tARN isoaceptantes reconocen mas de un tipo de aminoacil transferasa.} \tn 
% Row Count 3 (+ 2)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- La mayoria de los organismos tienen mas de 20 aminoacil transferasas, pero no siempre. NOTA: algunas bacterias no tienen la sintetasa para cargar la glutamina y usan otro tipo de aminoacil sintetasa para hacerlo (Glu y Gln)} \tn 
% Row Count 8 (+ 5)
% Row 3
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{-La especificidad del tARn al escoger aminoacil transferasas viene de dos lugares: el brazo aceptor (base discriminadora) y el blucle del anticodon.} \tn 
% Row Count 11 (+ 3)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- Tipicamente ocurren errores de carga de AA de 1 en 1000} \tn 
% Row Count 13 (+ 2)
% Row 5
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- es facil enter diferencias entre el triptofano y cisteina, la fenilalanina y tirosina,} \tn 
% Row Count 15 (+ 2)
% Row 6
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- estas enzimas tienen una envaginación que las ayuda a proofread como las ADN pol y las usan para leer el producto de la adenillilacion llevando a cabo una hidrolisis del AA equivocado (rechazado) o tamb se rechaza cuando no cabe el AMP-AA y tiene un error rate de 0.01\%} \tn 
% Row Count 21 (+ 6)
% Row 7
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{Clases de sintetasas:  (1) Enzimas clase I - unen al AA al 2'-OH del tARN y son generalmente monomericos. (2) Enzimas clase II - uenen al AA al extremo 3'-OH del tARN y suelen ser dimericos o tetradimericos. (3) Ambos: una vez liberado el AA equilibra rapidamente la union en el 3'-OH y 2'-OH} \tn 
% Row Count 27 (+ 6)
% Row 8
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- Estas enzimas estan encargadas de cargar a los tARN con sus respectivos AA.} \tn 
% Row Count 29 (+ 2)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{3.833cm}{x{1.7165 cm} x{1.7165 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\bf\textcolor{white}{Ribosome}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- compuesto de mARN y proteina} \tn 
% Row Count 1 (+ 1)
% Row 1
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- maquina multimegadalton} \tn 
% Row Count 2 (+ 1)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- coordina el reconocimiento correcto de los codones de mARN hecho por tARN} \tn 
% Row Count 4 (+ 2)
% Row 3
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- cataliza la formacion de los enlaces peptidicos entre la cadena peptidica y los AA de los tARN seleccionados} \tn 
% Row Count 7 (+ 3)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- desventaja: no es especifico y si se cargan los AA incorrectos a los tARN los accepta si tienen una interaccion adecuada con el anticodon.} \tn 
% Row Count 10 (+ 3)
% Row 5
\SetRowColor{white}
Eucariotas & Procariotas \tn 
% Row Count 11 (+ 1)
% Row 6
\SetRowColor{LightBackground}
28S (4800bn) + 5.8 (160bn) + 5 (120bn) + 50 L1, L2, L3 = subunidad mayor (60S) & 23S (2900bn) y 5s (120bn) + L1, L2, L3 (31 de ellas) = subunidad mayor (50S) \tn 
% Row Count 15 (+ 4)
% Row 7
\SetRowColor{white}
18S (1900bn) + 33 S1, S2, S3 = subunidad menor (40S) & 16S (1540 bn) + S1, S2, S3 (21 de ellas) = subunidad menor (30S) \tn 
% Row Count 19 (+ 4)
% Row 8
\SetRowColor{LightBackground}
60S +  40S = 80S & 50S + 30S = 70S \tn 
% Row Count 20 (+ 1)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{3.833cm}{p{0.3433 cm} p{0.3433 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\bf\textcolor{white}{Acetilacion}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- N-terminal normalmente} \tn 
% Row Count 1 (+ 1)
% Row 1
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- metionina (indicador) es hidroxilada y un grupo acetilo se agrega al nuevo AA N-terminal} \tn 
% Row Count 3 (+ 2)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- ocurre en 50\% de las proteinas eucariotas} \tn 
% Row Count 4 (+ 1)
% Row 3
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- resistente a su degradacion} \tn 
% Row Count 5 (+ 1)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- acetilacion reversible de la histona H4, lo cual regula la condensacion de la cromatina} \tn 
% Row Count 7 (+ 2)
% Row 5
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{{\bf{Donador}} Acetil-CoA y miristoil-CoA} \tn 
% Row Count 8 (+ 1)
% Row 6
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- grupo miristoil de 14 C en N-terminal lo cual permite la asociacion de la proteina modificada con las membranas} \tn 
% Row Count 11 (+ 3)
% Row 7
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- subunidad catalitica de la proteincinasa dependiente del cAMP (PKA) miristoilado} \tn 
% Row Count 13 (+ 2)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{3.833cm}{p{0.3433 cm} p{0.3433 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\bf\textcolor{white}{Sulfatacion}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- modificacion del sulfato} \tn 
% Row Count 1 (+ 1)
% Row 1
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- ocurre en residuos de Y en los fibrinogenos y algunas proteinas secretoras} \tn 
% Row Count 3 (+ 2)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{{\bf{Donador}}: \seqsplit{3'-fosfoadenosil-5'-fosfosulfato} (PAPS)} \tn 
% Row Count 5 (+ 2)
% Row 3
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- permanente} \tn 
% Row Count 6 (+ 1)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- {\bf{actividad biologica no reguladora}}} \tn 
% Row Count 7 (+ 1)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{3.833cm}{p{0.3433 cm} p{0.3433 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\bf\textcolor{white}{Glicosilacion}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- glicanos (oligosacaridos) se unen de manera covalente con algunos AA} \tn 
% Row Count 2 (+ 2)
% Row 1
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- no regula nada} \tn 
% Row Count 3 (+ 1)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- {\bf{solubiidad de proteinas y plegamiento correcto de los dominios}}} \tn 
% Row Count 5 (+ 2)
% Row 3
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- {\bf{estabilidad}} estracell para que no se degrade} \tn 
% Row Count 6 (+ 1)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- proteinas de membrana, casi no en intracelulares} \tn 
% Row Count 7 (+ 1)
% Row 5
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- eucariotas, virus, pero no procariotas} \tn 
% Row Count 8 (+ 1)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{+ las azucares añadidas son hidrofilicas, por ende la proteina se vuelve soluble en un medio acuoso}  \tn 
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{3.833cm}{p{0.3433 cm} p{0.3433 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\bf\textcolor{white}{Hidroxilacion}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- la hidroxilacion es la funcion de las hidroxilasas presentes en el RE (catalizar grupos -OH a algunas proteinas)} \tn 
% Row Count 3 (+ 3)
% Row 1
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- depende de {\emph{vitamina C (cofactor)}}} \tn 
% Row Count 4 (+ 1)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- ocurre en K, P (50\% de ellas presentes en colageno) y amidacion del C-terminal} \tn 
% Row Count 6 (+ 2)
% Row 3
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{{\bf{enzimas}}: prolil hidroxilasa (P) y lisil hidroxilasa (K)} \tn 
% Row Count 8 (+ 2)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- {\bf{donante de la amidacion del C-terminal}}: G} \tn 
% Row Count 9 (+ 1)
% Row 5
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- colagenos; hormonas pep (oxitocina y vasopresina) amidadas en la C-terminal.} \tn 
% Row Count 11 (+ 2)
% Row 6
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- mala hidroxilacion del colageno lleva a escorbuto junto a un deficit de vitamina C} \tn 
% Row Count 13 (+ 2)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{3.833cm}{X}
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{1}{x{3.833cm}}{\bf\textcolor{white}{Codigo genetico}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{1}{x{3.833cm}}{\seqsplit{http://ufq.unq.edu.ar/sbg/archivos/guias\_talleres/Guia\_Complementaria\_Taller\_Programacion\_Biologia\_2020.pdf}} \tn 
% Row Count 3 (+ 3)
% Row 1
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{1}{x{3.833cm}}{} \tn 
% Row Count 3 (+ 0)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{1}{x{3.833cm}}{} \tn 
% Row Count 3 (+ 0)
% Row 3
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{1}{x{3.833cm}}{} \tn 
% Row Count 3 (+ 0)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{1}{x{3.833cm}}{} \tn 
% Row Count 3 (+ 0)
% Row 5
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{1}{x{3.833cm}}{} \tn 
% Row Count 3 (+ 0)
% Row 6
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{1}{x{3.833cm}}{} \tn 
% Row Count 3 (+ 0)
% Row 7
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{1}{x{3.833cm}}{} \tn 
% Row Count 3 (+ 0)
% Row 8
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{1}{x{3.833cm}}{} \tn 
% Row Count 3 (+ 0)
% Row 9
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{1}{x{3.833cm}}{} \tn 
% Row Count 3 (+ 0)
% Row 10
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{1}{x{3.833cm}}{} \tn 
% Row Count 3 (+ 0)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}-}
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{1}{x{3.833cm}}{ver imagen porfi del codigo genetico}  \tn 
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}-}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{3.833cm}{p{0.3433 cm} p{0.3433 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\bf\textcolor{white}{imagenes - explation below}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{} \tn 
% Row Count 0 (+ 0)
% Row 1
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{} \tn 
% Row Count 0 (+ 0)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{} \tn 
% Row Count 0 (+ 0)
% Row 3
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{} \tn 
% Row Count 0 (+ 0)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{} \tn 
% Row Count 0 (+ 0)
% Row 5
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{} \tn 
% Row Count 0 (+ 0)
% Row 6
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{} \tn 
% Row Count 0 (+ 0)
% Row 7
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{} \tn 
% Row Count 0 (+ 0)
% Row 8
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{} \tn 
% Row Count 0 (+ 0)
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\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{} \tn 
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\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{} \tn 
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% Row 69
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\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{} \tn 
% Row Count 0 (+ 0)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{dowload pdf and paste your favorite images of translation, because this things doesn't let me add them. You can add them in your ipad or phone in the files app, idk about samsung users, i'm sorry. this website doesnt let me add images anywhere, i've already tried countless of times.}  \tn 
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{3.833cm}{p{0.3433 cm} p{0.3433 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\bf\textcolor{white}{Molecule's POV - Procariotas}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{Proceso - traduccion} \tn 
% Row Count 1 (+ 1)
% Row 1
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{{\bf{iniciacion}}:} \tn 
% Row Count 2 (+ 1)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- ribosomas: encargados de la sintesis proteica} \tn 
% Row Count 3 (+ 1)
% Row 3
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- ARNt iniciador: sitio P (peptidil-ARNt)} \tn 
% Row Count 4 (+ 1)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- factores de ini.: responsables de la formacion del complejo traduccional, colocacion del ARNm en el ribosoma y el ARNt iniciador en el sitio P} \tn 
% Row Count 7 (+ 3)
% Row 5
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{{\bf{enlongacion}}:} \tn 
% Row Count 8 (+ 1)
% Row 6
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- EF-Tu se une al aminoacil-ARNt y lo lleva al sitio A} \tn 
% Row Count 10 (+ 2)
% Row 7
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- EF-G: desplazamiento del ribosoma a lo largo del ARNm} \tn 
% Row Count 12 (+ 2)
% Row 8
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- aminoacil-ARNt: llevan un AA especifico y se emparejan con el codon del ARNm} \tn 
% Row Count 14 (+ 2)
% Row 9
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{{\bf{terminacion}}} \tn 
% Row Count 15 (+ 1)
% Row 10
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- factores de liberacion especificos} \tn 
% Row Count 16 (+ 1)
% Row 11
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- factores de liberacion no especificos} \tn 
% Row Count 17 (+ 1)
% Row 12
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- se disocia el ribosoma del ARNm y ambos quedan libres} \tn 
% Row Count 19 (+ 2)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{3.833cm}{p{0.3433 cm} x{3.0897 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\bf\textcolor{white}{Molecule's POV - Eucariotas}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{Proceso - traduccion} \tn 
% Row Count 1 (+ 1)
% Row 1
\SetRowColor{white}
 & {\bf{Iniciacion}}: \tn 
% Row Count 2 (+ 1)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
 & eIF1, eIF1A, eIF2, eIF3 y eIF4F: ayudan a posicionar el ribosoma en el codón de inicio AUG del ARNm y promueven la unión del complejo de iniciación ribosomal. \tn 
% Row Count 7 (+ 5)
% Row 3
\SetRowColor{white}
 & aminoacil-ARNt iniciador: lleva un M al sitio P del ribosoma \tn 
% Row Count 9 (+ 2)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
 & {\bf{Enlongacion}}: \tn 
% Row Count 10 (+ 1)
% Row 5
\SetRowColor{white}
 & aminoacil-ARNt: llevan AA especificos al sitio A del ribosoma como lo vaya pidiendo el ARNm \tn 
% Row Count 13 (+ 3)
% Row 6
\SetRowColor{LightBackground}
 & eEF1A: se encarga de llevar los aminoacil-ARNt al sitio A del ribosoma \tn 
% Row Count 15 (+ 2)
% Row 7
\SetRowColor{white}
 & eEF2: promueve el desplazamiento del ribosoma a lo largo del ARNm durante la translocación. \tn 
% Row Count 18 (+ 3)
% Row 8
\SetRowColor{LightBackground}
 & {\bf{Terminacion}}: \tn 
% Row Count 19 (+ 1)
% Row 9
\SetRowColor{white}
 & eRF1: se une al codón de terminación en el sitio A del ribosoma y promueve la liberación de la cadena polipeptídica completa \tn 
% Row Count 23 (+ 4)
% Row 10
\SetRowColor{LightBackground}
 & eRF3: actúa como un cofactor para eRF1 \tn 
% Row Count 25 (+ 2)
% Row 11
\SetRowColor{white}
 & y los {\bf{ribosomas}} \tn 
% Row Count 26 (+ 1)
% Row 12
\SetRowColor{LightBackground}
 & Ribosomas: se une al ARNm al principio y se separa de el al final de la sintesis proteica. \tn 
% Row Count 29 (+ 3)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{3.833cm}{p{0.3433 cm} p{0.3433 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\bf\textcolor{white}{Fosforilacion}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- muy comun en cells animales} \tn 
% Row Count 1 (+ 1)
% Row 1
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- reversible (fosforilacion y desfosforilacion)} \tn 
% Row Count 2 (+ 1)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- mecanismo de {\bf{regulacion de la actividad biologica}} de una proteina por modificacion covalente} \tn 
% Row Count 4 (+ 2)
% Row 3
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- se pueden agregar uno o mas P} \tn 
% Row Count 5 (+ 1)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- EJ: sintesis de glucogeno, fosforliacion de glucogeno en hepatocitos en respuesta al glucagon del pancreas; puede inhibir su actividad a medida de que la actividad de las fosforilasas aumenta} \tn 
% Row Count 9 (+ 4)
% Row 5
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- la fosforilacion de los grupos fosfato es un interruptor que apaga o prende el proceso de division celular, y si ocurre una mutacion en el material genetico que cambia a un AA por otro en una proteina de la division celular, hace que estas se multipliquen sin control ya que se pierde el sitio de union del P que bloquea su accion} \tn 
% Row Count 16 (+ 7)
% Row 6
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- {\bf{proteinas que fosforilan}}: cinasas (ATP + proteina \textless{}-{}-\textgreater{}fosfoproteina + ADP)} \tn 
% Row Count 18 (+ 2)
% Row 7
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- {\bf{proteinas que desfosforilan}}: fosfatasas} \tn 
% Row Count 19 (+ 1)
% Row 8
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{{\bf{cells animales}}: S, T y Y estan sujetas a la la fosforilacion que afecta a si gupo -OH} \tn 
% Row Count 21 (+ 2)
% Row 9
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- el nivel de fosforilacion de la Y es menor, pero su fosforilacion es muy importante para la actividad de receptores del factor de crecimiento controlada por su fosforilacion.} \tn 
% Row Count 25 (+ 4)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}

\begin{tabularx}{3.833cm}{p{0.3433 cm} p{0.3433 cm} }
\SetRowColor{DarkBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{\bf\textcolor{white}{Puentes disulfuro}}  \tn
% Row 0
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- ocurre en el RE por la proteina disulfuro-isomerasa por su ambiente oxidante} \tn 
% Row Count 2 (+ 2)
% Row 1
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- proteinas secretoras, lisosomales,  y dominios exoplasmaticos de proteinas de mem.} \tn 
% Row Count 4 (+ 2)
% Row 2
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- {\bf{excepciones}}: proteinas citosolicas de emergencia cuando el potencial reductor de la cell falla, que funcionan como sensores de oxidacion por residuos de C uno contra otro y accionan mecanismos celulares en respuesta} \tn 
% Row Count 9 (+ 5)
% Row 3
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- proteinas forman enlaces covalentes entre si mediante estos tipos de puentes de enlace entre la C de la misma cadena (intracaterina) o de otra cadena (intercaterina)} \tn 
% Row Count 13 (+ 4)
% Row 4
\SetRowColor{LightBackground}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- ocurre mas en proteinas extracel que intracel} \tn 
% Row Count 14 (+ 1)
% Row 5
\SetRowColor{white}
\mymulticolumn{2}{x{3.833cm}}{- favorece el plegamiento correcto, protegen a la conformacion nativa de proteina la degradacion} \tn 
% Row Count 16 (+ 2)
\hhline{>{\arrayrulecolor{DarkBackground}}--}
\end{tabularx}
\par\addvspace{1.3em}


% That's all folks
\end{multicols*}

\end{document}